<p>세 번째와 네 번째 배양은 균체성장과 아세트산 생산이 미생물 접종 직후부터 바로 증가하였다(Fig. \(2\), StageⅢ 과 IV). 세 번째와 네 번째 배양의 경우 배양기간이 일부 차이가 났지만 최종 균체농도와 아세트산 농도는 각각 약 \( 0.3 \) \( \mathrm{OD} \) 및 \( 90 \mathrm{mmol} / \mathrm{L} \) 로 유사하였다. 아세트산 생산속도는 \( 6.37 \sim 7.35 \mathrm{mmol} / \mathrm{L} / \mathrm{d} \) 범위로 stage I, II \( (2.04 \sim 3.64 \)\( \mathrm{mmol} / \mathrm{L} / \mathrm{d}) \) 에 비해 2 배 이상 증가하였다. 이는 본 생물전기화학 조건에서 \( \mathrm{CO}_{2} \) 전환 전기활성 미생물들의 농화 배양이 적절히 진행되었음을 나타낸다.</p><h2>3.2 전기 이용 아세트산 전환 효율</h2><p>Fig. \(3\)은 전기활성 혼합미생물의 네 차례 농화배양동안 투입전기(전자)의 아세트산 전환 쿨롱효율을 나타낸다. 첫번째 배양의 쿨롱효율은 \( 52 \% \) 이였고, 두 번째는 다소 낮았지만 이후 계대배양에 따라 쿨롱효율이 증가하는 경향이 관찰되었다. 최대 쿨롱효율은 4 차 배양 후 \( 68 \% \) 로 가장 높았고, 첫 번째 배양 대비 \( 29 \% \) 증가하였다. 이는 앞선 아세트산 생산속도의 증가와 함께 \( \mathrm{CO}_{2} \) 를 아세트산으로 전환하는 미생물 군집이 전체 배양액 내 우점종이 되고 있음을 나타낸다.</p><p>Table \(1\)은 본 연구에서 관찰된 쿨롱효율과 아세트산 농도 및 생산성을 다양한 미생물 접종원을 사용한 문헌과 비교한 결과를 나타낸다. \( \mathrm{CO}_{2} \) 전환 생물전기화학 성능은 미생물촉매의 전기활성 뿐만 아니라 다양한 반응기의 운전조건(이온교환막, 전극 종류, 인가전압, 외부 전자매개체 공급 여부 등)에 따라 달라질 수 있으므로 단순비교는 어렵다. 그럼에도 불구하고 본 연구의 최대 아세트산 농도 \( (93 \)\( \mathrm{mmol} / \mathrm{L}) \) 및 생산성 \( (7.35 \mathrm{mmol} / \mathrm{L} / \mathrm{d}) \) 과 쿨롱효율 \( (64 \%) \) 은 여러 문헌에 비해 전반적으로 우수한 것으로 판단된다. 이는 갯벌슬러지가 생물전기화학 \( \mathrm{CO}_{2} \) 전환을 위한 미생물 공급원으로 효과적으로 사용 가능하다는 것을 나타낸다. 아세트산 생산성 및 쿨롱효율의 최적화를 위해서는 혼합미생물의 생리학, 생화학, 분자생물학적 특성을 고려한 추가적인 공정최적화 연구가 필요하다고 판단된다.</p>
세 번째 배양은 균체성장과 아세트산 생산이 미생물 접종 직후부터 바로 증가했어?
YES