<h1>재료 및 방법</h1><h2>정수공정별 수질조사 항목 및 방법</h2><p>정수공정별에 따른 수질조사는 6단계 즉 원수, 전오존 처리조, 침전조, 여과 수조, 후오존 처리조, BAC 여과수(석탄계 여과수)시료를 대상으로 실시하였다. 생물활성탄 공정에 따른 수질조사 항목의 이화학적 분석은 Standard method에 따랐다. 미생물 항목인 총대장균군(Total coliforms) 및 대장균(E.coli) 실험은 막여과법을 이용하여 실시하였으며, 종속영양세균(HPC)은 R2A agar (Difco사) 평판배지에 시료 \( 1 \mathrm{ml} \) 를 도말한 후 \( 25^{\circ} \mathrm{C} \) 배양기에서 7일간 배양하여 형성된 colony를 계수하였다.</p><h2>바이러스 회수율 조사</h2><p>바이러스 회수율은 음성시료와 양성시료 각각 1개를 이용하여 3회 실시하였다. 먼저 양성시료는 멸균된 폴리프로필렌 용기에 3차 증류수 \( 40\mathrm{l} \)를 넣고 약 \( 200 \mathrm{PFU} / \mathrm{ml} \) 농도의 약독화 폴리오바이러스 정도관리용 저장용액 \( 1 \mathrm{ml} \)를 첨가하였다. 혼합시킨 시료는 펌프를 이용하여 1-MDS filter (Cuno사)가 들어 있는 표준필터장치로 통과시켜 여과하였다. 또한, 음성시료도 3차 증류수 \( 40\mathrm{l} \)를 멸균된 폴리프로필렌 용기에 넣어 양성시료 실험과 동일하게 통과시켰다. 여과시킨 1-MDS filter를 총 배양성 바이러스 분석법에 따라 농축하여 3~4일 전에 배양된 BGM (Buffalo Green Monkey kidney) 세포에 각각 감염시켜 세포병변현상(Cytopathic effect: CPE) 여부를 관찰한 후 MPN program (ICR-MPNV Software Program)을 이용하여 수치를 산출하였다.</p><h2>세포배양</h2><p>바이러스 배양에는 국립환경연구원에서 분양받은 BGM 세포주와 한국세포주은행으로부터 분양받은 VERO 세포주, Hep-2 세포주, Hela 세포주, HepG2 세포주, MDCK 세포주를 사용하였다. 세포의 계대는 먼저 monolayer가 형성된 세포주를 배양기에서 꺼내어 배양용기 안에 있는 배지를 제거한 후 trypsin-EDTA를 세포배양용기에 적정량(약 \( 10 \mathrm{ml}) \)을 넣고 \( 36.5 \pm 1^{\circ} \mathrm{C} \) 배양기에 5분 정도 방치하였다. 세포들이 배양용기의 바닥에서 완전히 떨어지는 것을 확인한 후 떨어진 세포들을 \( 1,000 \times \mathrm{g},\) 10분간 실온에서 원심 분리한 후에 상층액을 깨끗이 제거하고 침전된 세포를 새로운 증식용 배양액에 혼합한 후 세포배양 플라스크 \( \left(25 \mathrm{~cm}^{2}\right) \)에 분주하여 \( 36.5^{\circ} \mathrm{C}, 5 \% \mathrm{CO}_{2} \)의 배양기에서 배양하였다.</p><h2>Pilot-plant 장치</h2><p>본 연구에 사용된 Pilot-plant 실험장치는 기존 급속 여과시스템에서 전 염소처리 공정이 생락되었고, 오존의 전◦후 처리와 BAC 공정을 부가한 시스템으로 실험하였으며, BAC운영조건은 Table 1과 같다. 원수는 낙동강 하류지점인 매리취수장의 표층수를 사용하였고, 응집제로는 Polyaluminum Sulfate Organic Magnesium (PSOM)을 사용하였다. 또한 본 실험장치의 입상활성탄의 재질은 석탄계(F-400, Calgon사) 재생탄이며 여과층의 깊이는 \( 2.5 \mathrm{~m} \)이다.</p>
어떤 세균을 평판배지에 시료 \( 1 \mathrm{ml} \) 를 도말한 후 배양하였는가?
종속영양세균(HPC)